麥氏比濁管是McFarland發(fā)明的一種用于微生物比濁的不同濁度的標準濁度管。具體的配制方法是根據(jù)硫酸和氯化鋇的比例來定的，有表可查，這樣不同比例生成的硫酸鋇沉淀的濃度不同，且都有定值。麥氏比濁管的配比如下：

這是傳統(tǒng)的麥氏比濁管的配制方法，目前也有市售的商品化產品，不需要自己配制，并且還有由乳膠粒子懸浮液制成的麥氏比濁管，與傳統(tǒng)的麥氏比濁管相比，保存時間更長也更穩(wěn)定。但麥氏比濁管具體應該怎ô使用呢？

操作方法：

1、輕搖標準試管。

2、無菌操作將被測定的肉湯培養(yǎng)物加到與標準管相同直徑（大�。┑臒o菌試管中。

3、以無菌操作向被測定試管加入無菌生理鹽水（NaCl），直到濃度與所要求的標準管的濃度相同。

4、直接用眼睛看（需要經驗，誤差較大）。

5、找張白紙，打上平行直線，然后觀察讀數(shù)（如圖示，利用光在不同濃度液體折射不同）。

注意事項：

1、如果測定的肉湯培養(yǎng)物不澄清，由培養(yǎng)物的值減去δ接種培養(yǎng)基的值來校正細菌濃度。4號管(肉湯培養(yǎng)物)-1號管(孵育過的δ接種的肉湯管)=3號管(校正讀數(shù))。

2、如果肉湯顏色很深，把δ接種試管放在標準管的后面讀數(shù)即可。

3、測定好的細菌，最好做一下梯度稀釋涂布計數(shù)。

4、此濃度是對應的大腸桿菌的濃度，如果是其他細菌，會有一定的差別，但通常差別都在一個數(shù)量級之內，適合于普通實驗。

5、此種方法測定的準確性不是很高，如果是對細菌數(shù)量要求較精確的，請用紫外分光光度計。

6、麥氏比濁液應放室溫暗處保存，用前混勻，有效期為6個月。應用時為了準確也可以使用比濁儀但一定要防止麥氏濁度標準管δ搖勻或已過期失效。

在微生物學檢驗中，麥氏比濁法常作為細菌鑒定、實驗配制菌液時大致判斷菌液濃度的一種方法，通常認為，如將配菌液濃度配成0.5麥氏比濁管時，相當于1.0×10⁸細菌數(shù)/mL，由于方法本身就是一種估計的方法，所以盡管不同細菌大小差異很大，但除了真菌孢子，細菌的差別不大，結果不會有影響。

另附孢子菌懸液制作方法：

菌種活化

將保藏菌接種在PDA斜面培養(yǎng)基試管中，培養(yǎng)7d～14d，使生成大量孢子。δ制備孢子懸液時，不得拔去棉塞。ÿ打開1支只供制備1次懸液，ÿ次制備孢子懸液必須使用新培養(yǎng)的ù菌孢子。

孢子懸液制備

在上述PDA斜面培養(yǎng)基中加入少量無菌蒸餾水，用無菌接種環(huán)輕輕刮取表面的新鮮ù菌孢子，將孢子懸液置于250mL錐形瓶內，然后注入40mL洗脫液。

錐形瓶中加入直徑5mm的玻璃珠10�！�15粒與孢子混合，具塞后置水浴振蕩器中不斷振蕩使成團的孢子散開，然后用單層棉紗布過濾以除去菌絲。將其裝入滅菌離心管中，用離心機分離沉淀孢子，去上清液。再加入40mL洗脫液，重復離心操作3次。制成濃度為(0.8～1.2)×10⁶spores/mL的ù菌孢子懸液。若需要精確計數(shù)，則可以用改良察氏液體培養(yǎng)基稀釋孢子懸液，用血球計數(shù)板計數(shù)。孢子懸液應在當天使用，若不在當天使用應在 3℃～7℃保存，并盡量在4d內使用。