感染懸浮細胞是使桿病毒系統(tǒng)生產(chǎn)蛋白的普遍方法。懸浮培養(yǎng)的細胞很容易從10ml擴大到100L。一般來說，懸浮的細胞在無血清的培養(yǎng)液中培養(yǎng)。這種培養(yǎng)液許多公司有售，比如Life Technologies、Hyclone、Biowhitaker、JRH Biosciences、Expression Systems等，用起來都不錯，盡管由于細胞株和目的蛋白的不同，效果有所差異。
最好是將目的蛋白和細胞株用不同的培養(yǎng)液做一個表達試驗，選出表達效果最好的一種培養(yǎng)液。在進行這個表達試驗之前要先使你的細胞株分別適應(yīng)不同的培養(yǎng)液，否則試驗結(jié)果不具有代表性。
注意：為了優(yōu)化表達，你必須了解你的細胞的生長參數(shù)；為了方便新手，我將列出一些生長參數(shù)通常的值。我最喜歡的Sf9細胞株可以最低以2×105細胞/ml的濃度分裝，并且恢復(fù)幾乎沒有滯后期。在對數(shù)期，20個小時細胞數(shù)目就可以翻倍，濃度最高可以達到5×106細胞/ml。下面的實驗步驟將以上面列出的生長參數(shù)為前提。如果你的細胞株生長參數(shù)有所不同，你需要對實驗步驟做出合適的調(diào)整。
低MOI感染簡介
低MOI（Multiplicity Of Infection，等于用于感染的病毒數(shù)目與細胞數(shù)目的比值）感染是擴增病毒的最好方法。這有兩個原因。一方面，低MOI感染是最快也是最簡單的擴增病毒數(shù)量的方法；另外，低MOI感染是保存病毒基因的完整性、防止DIP（Defective Interfering Particles，即只包裝入部分基因組的病毒顆粒）生成的最好方法。
還可以用低MOI感染的方法生產(chǎn)蛋白，但是難以控制，并且不適于提高蛋白產(chǎn)量。然而病毒需要量少的確是該法的一個優(yōu)點，對于大規(guī)模的生產(chǎn)這個優(yōu)點極為有利，只要它們可以可靠的復(fù)制，這因不同的重組病毒而異。對于小規(guī)模的蛋白生產(chǎn)，我更喜歡用高MOI感染。
一般而言，低MOI感染的方法就是先用病毒感染少量細胞，這些被感染的細胞復(fù)制出足夠的病毒，去感染培養(yǎng)物中剩余的尚未被感染的細胞，而這第二批被感染的細胞就是病毒或者蛋白的主要生產(chǎn)者。
重要的是培養(yǎng)液的量要滿足細胞生長的需要，否則將沒有足夠的營養(yǎng)使細胞生產(chǎn)病毒或者蛋白。另一方面，病毒也不可以太多，以免在細胞增殖到合適密度并用掉所有營養(yǎng)資源之前就被殺死。最理想的是，先確定在沒有病毒感染時，細胞保持正常狀態(tài)所能達到的最大密度，那么如果病毒的量能夠使細胞在達到該密度的1/3~2/3時停止擴增是最理想的。我通常是使用該密度的1/2。
采用這個方法需要使用足夠的病毒感染細胞，在24~48小時內(nèi)使細胞停止增長、所有的細胞都被感染。因此，以生長停止作為完全感染的標(biāo)志，培養(yǎng)物在達到完全感染后可以繼續(xù)生長大約48小時。如果以生產(chǎn)蛋白為目的，這個過程可能需要更長。
步驟：
將細胞以2~4×105細胞/ml的密度分裝到搖瓶中，達到搖瓶體積的20~40%。在27±2℃培養(yǎng)，轉(zhuǎn)速為100~130rpm。
第0天
培養(yǎng)細胞至密度達到4~8×105細胞/ml，即已經(jīng)進入對數(shù)期生長，但是仍處于低濃度。
然后加入少量病毒，病毒量依賴于滴度，但是最好使MOI值介于0.1~0.5。比如，如果你的細胞濃度為6×105細胞/ml，而病毒滴度為3×107pfu/ml，那么要使MOI介于0.1~0.5，所加的病毒的體積應(yīng)該是細胞體積的0.2~1%。
將搖瓶放回27℃搖床，培養(yǎng)24小時。
感染后第1天
計數(shù)細胞，估計細胞大小。如果病毒的實際滴度比估計的高，即MOI值高于0.5，你將看到明顯的細胞停止生長和腫脹的跡象；反之，如果MOI值接近0.3或者更低，你將看到細胞幾乎沒有受到病毒影響，它們的數(shù)目擴增到接近1.2×106細胞/ml，并且看起來健康。這個時候，被感染的細胞應(yīng)該正在釋放病毒至培養(yǎng)液中，去感染其它細胞。
感染后第2天
再次計數(shù)細胞并且估計細胞的大小。此時大多數(shù)細胞應(yīng)該已經(jīng)被感染。細胞的數(shù)目應(yīng)該遠遠低于2.4×106細胞/ml（這是在沒有病毒感染的情況下細胞正常生長應(yīng)該達到的密度），并且明顯膨脹。
如果細胞的數(shù)目在感染后第0天和第1天之間沒有增長，可能是所有的細胞都被同時感染所致，在感染后第二天就可以收獲了。如果不是這種情況，將搖瓶放回27℃搖床，培養(yǎng)24小時。
感染后第3天
再次計數(shù)細胞，估計細胞大小。如果實驗進展與預(yù)料一致，此時的細胞數(shù)目與第2天比應(yīng)該沒有增長。
如果細胞數(shù)目在感染后第1天和第2天之間就已經(jīng)停止增長，這說明所有的細胞在感染后第1天就已經(jīng)被全部感染，此時可以收獲細胞，因為感染時間已經(jīng)達到48小時，這是一般的情況。
如果細胞數(shù)目在感染后第1天和第2天之間仍然有一定增長，并且此時尚未達到平臺期，將搖瓶放回27℃搖床，培養(yǎng)24小時。
感染后第4天
再次計數(shù)細胞，估計細胞大小。此時最好所有的細胞都被徹底感染、膨脹、生長停止，否則說明用于感染的病毒的量不夠，不能在細胞生長達到平臺期前使其停止。此時應(yīng)該收獲培養(yǎng)物，離心分離細胞，將培養(yǎng)液避光保存于4℃，或者凍存于-70℃。
通常最好將細胞沉淀凍存。我喜歡的方法是將細胞重懸于小量（比如1/4體積）的PBS或者TBS（含有濃度為通常5倍的蛋白酶抑制劑）中，充分重懸后直接用微量移液器加入充滿液氮的干凈Dewar瓶中。滴下的重懸物遇到液氮迅速凍結(jié)形成小球，這些小球可以被分裝到50ml圓錐管中，凍存于Revco冰箱中。當(dāng)需要從細胞中純化蛋白時，只需將這些小球逐個加入到3~5倍體積室溫下不斷攪拌的裂解緩沖液中，它們將很快融化，使緩沖液降至接近0℃。這些小球還可以用鑷子方便的轉(zhuǎn)移到eppendorf管中作小量實驗。